FALCON-即時產(chǎn)生熒光壽命成像 (FLIM)
我們經(jīng)常聽到別人抱怨熒光壽命測量:“壽命分析太復(fù)雜了!"但這種情況即將改變!新技術(shù)和新概念的發(fā)展促進(jìn)了數(shù)據(jù)評估,意味著熒光壽命成像(FLIM)的速度提高了10倍,可以媲美標(biāo)準(zhǔn)共聚焦成像,且操作簡單。
圖為小鼠胚胎的壽命圖像。722個視野拼接,擬合出4個獨(dú)立的特征壽命。采集時間約1小時-傳統(tǒng)方法約1天。
熒光過程提供了兩個用于成像的測量參數(shù):強(qiáng)度和熒光壽命。熒光壽命是指分子停留在激發(fā)態(tài)的時間??梢酝ㄟ^觀察足夠大量的激發(fā)-發(fā)射事件集合來測量熒光染料的典型壽命。我們可以測量圖像中所有像素的典型壽命,并將這些數(shù)字記入數(shù)組元素。那就是熒光壽命成像[1](FLIM,也稱為τ-映射)。典型的熒光壽命范圍在0.2到20納秒之間。
熒光壽命與熒光染料的濃度無關(guān)。無論樣品結(jié)構(gòu)僅有零星熒光染料還是載滿熒光染料:壽命信號始終相同,并表明在同一環(huán)境中存在相同的熒光染料。因此,熒光壽命不受光漂白的影響。樣品深處的圖像將比表面圖像暗得多——但壽命并沒有改變。這是壽命測定的主要優(yōu)勢。
如果分子環(huán)境刺激激發(fā)態(tài)衰變而不發(fā)射光子,則熒光強(qiáng)度會降低(淬滅)。熒光淬滅是一條單獨(dú)的發(fā)射路徑,因此在動力學(xué)上與熒光過程形成競爭關(guān)系。激發(fā)態(tài)存儲現(xiàn)在可以通過一個以上的過程衰變,從而縮短熒光壽命。這種壽命的改變可用于收集分子環(huán)境的信息。
一種特殊類型的淬滅是將激發(fā)能量以非輻射的方式傳遞到相鄰的不同熒光染料中:“熒光共振能量轉(zhuǎn)移"[2],FRET。此時,不僅第一個熒光染料(供體)變暗,壽命變短,而且第二個熒光染料(受體)在“錯誤的"激發(fā)顏色下開始發(fā)光。由于這種效果的產(chǎn)生需要兩種熒光染料(小于10 nm)的密切接觸,因此將其用作研究分子相互作用的“分子標(biāo)尺"。它也是許多現(xiàn)代FRET生物傳感器的基礎(chǔ),專門用于測量活體樣本中的各種細(xì)胞內(nèi)參數(shù):Ca2+或其他離子濃度追蹤、酸堿度、極性和電位測量、蛋白質(zhì)相互作用等。
FLIM的黃金標(biāo)準(zhǔn)是“時間相關(guān)單光子計(jì)數(shù)"[3]TCSPC,它與多光子共聚焦顯微鏡兼容。用光脈沖照射樣本,測量發(fā)射光子到達(dá)的時間。為重建典型的壽命,這種測量要在同一樣本位置重復(fù)幾次。需要測量幾百個事件才能達(dá)到大約10%的準(zhǔn)確度。然后將數(shù)據(jù)按時間分組放入直方圖中。然后對該直方圖中隨時間出現(xiàn)的衰變進(jìn)行數(shù)學(xué)擬合,并直接提供所需的熒光壽命(圖01a-c)。
圖01a:測量激光脈沖激發(fā)(藍(lán)色箭頭)后發(fā)射光子(紅色箭頭)的到達(dá)時間t?。此處繪制了5個測量值。
圖01b:到達(dá)時間的直方圖,包括上述示例中五個事件的集合。大多數(shù)計(jì)數(shù)#時間都很短。直方圖用指數(shù)衰減(紅色)來擬合。
圖01c:擬合顯示,例如,兩個單衰變(藍(lán)色和綠色曲線),衰變時間t?和t?,振幅為A?和A?。求和將再次獲得紅色衰變曲線。
這個過程是zuijing確的,并可以重復(fù),但需要一定時間。測量后,系統(tǒng)在大約100納秒的死區(qū)時間內(nèi)準(zhǔn)備好進(jìn)行下一次發(fā)射。要錄入400個事件,測量一個像素的時間達(dá)40微秒。一張512x512的圖像大約需要12秒,這無法適應(yīng)快速變化和移動的生命系統(tǒng)。
目前的解決方案需要一定的技術(shù)靈活性、復(fù)雜的手動數(shù)據(jù)處理和jing密的評價程序。
徠卡顯微系統(tǒng)推出了一款FLIM顯微鏡:FALCON(FAst Lifetime CONtrast)熒光壽命成像系統(tǒng)可以解決以上所有問題。
本系統(tǒng)基于混合探測器(HyD)[4],是理想的壽命成像傳感器,具有極短的死區(qū)時間。激光脈沖序列和發(fā)射光子脈沖都以高采樣率即刻實(shí)現(xiàn)數(shù)字化,將測得的距離直接輸入數(shù)據(jù)池。這些到達(dá)時間用于輸出“快速-FLIM"圖像。
新方法允許使用大多數(shù)激光脈沖,并應(yīng)用一個過濾器來限制只有一個光子發(fā)射的脈沖事件。在第一個光子到達(dá)后不久,隨即到達(dá)的光子不可避免的會被忽略,可以通過智能數(shù)學(xué)方法進(jìn)行校正?;谝陨戏N種因素,圖像記錄速度提高了10倍。
所有FALCON FLIM成像均集成在共聚焦顯微鏡中。記錄FLIM就像激活一個額外的通道。用于3D、時間和光譜系列的多維采集模式可立即用于FLIM成像。例如標(biāo)題圖像:具有經(jīng)典組織學(xué)染色的小鼠胚胎。使用NAVIGATOR軟件,創(chuàng)建了722個圖塊,每個圖塊為512x512像素的圖稿。原始圖像有1.9億像素。用四個指數(shù)對壽命進(jìn)行擬合,并以顏色進(jìn)行編碼。
在功能成像領(lǐng)域,我們希望監(jiān)測小分子、離子或電勢的動態(tài)變化。這通常是用熒光探針完成的。其中多數(shù)顯示出強(qiáng)度和壽命的變化。也可以用熒光蛋白裝飾蛋白質(zhì),并在活細(xì)胞中表達(dá)這些構(gòu)建體。該技術(shù)利用FRET跟蹤活細(xì)胞中的分子相互作用。最為現(xiàn)代化的工具是蛋白質(zhì)或肽,它們與所需的分析物(例如Ca2+)結(jié)合,并裝飾有一對進(jìn)行FRET的熒光蛋白。結(jié)合分析物后,肽將發(fā)生構(gòu)象變化,F(xiàn)RET將出現(xiàn)或消失。這些探針被稱為FRET-生物傳感器。生物傳感器的一種是利用cAMP結(jié)合蛋白Epac[5]。
圖02:用游離態(tài)的cAMP刺激培養(yǎng)細(xì)胞,并用Epac FRET-生物傳感器進(jìn)行監(jiān)測。在紅色圓圈區(qū)域分析信號(平均到達(dá)時間t?)。隨時間變化的圖示見底部。由K.Jalink,B.van den Broek,NKI Amsterdam(NL)提供。
FALCON的技術(shù)速度夠快,可以在活細(xì)胞中使用化學(xué)傳感器和FRET生物傳感器進(jìn)行熒光壽命成像。
無染色應(yīng)用是分析活體材料中的內(nèi)源性熒光。例如:癌細(xì)胞抑制細(xì)胞呼吸,傾向于無氧糖酵解(瓦博格效應(yīng)),這會導(dǎo)致積累更高濃度的熒光NADH[6]。即使沒有活檢,多光子顯微鏡也能在皮膚組織中進(jìn)行深度成像。同樣,壽命對比度要可靠得多,因?yàn)樯顚拥娘@微鏡會受到吸收和陰影效應(yīng)的影響,從而使強(qiáng)度信號失真。
傳統(tǒng)意義上,不同的熒光染料以其不同的顏色來區(qū)分。如果激發(fā)和發(fā)射相同,仍然可以通過壽命進(jìn)行區(qū)分。發(fā)射強(qiáng)度和壽命可以作為顏色的函數(shù)獨(dú)立記錄。因此,可見熒光染料的數(shù)量是發(fā)射光譜和擬合壽命的乘積。
圖03:lt-染料分離的原理證據(jù)(6個信號)。用480 nm激發(fā)云杉葉的新鮮切片,在兩個通道(頂部和底部行)中進(jìn)行記錄,每個通道可分開顯示三個壽命(從左到右)。由Leica Microsystems的I.Steinmetz提供支持。
徠卡顯微系統(tǒng)的FALCON(FAst Lifetime CONtrast)共聚焦和多光子顯微鏡匯集了所有這些新技術(shù)和新概念,生成FLIM技術(shù),適用于多個應(yīng)用領(lǐng)域。相較于傳統(tǒng)的TSCPS方法(時間相關(guān)單光子計(jì)數(shù)),圖像采集速度快了10倍,是迄今為止壽命成像的黃金標(biāo)準(zhǔn)。從而可以使用壽命對比來監(jiān)測活體樣本的運(yùn)動學(xué)和動力學(xué)情況。
其直接實(shí)現(xiàn)和自動化使研究人員不再需要耗時于硬件調(diào)整和數(shù)據(jù)評估。3D堆疊、延時序列、鑲嵌掃描和激發(fā)或發(fā)射波長掃描等復(fù)雜的數(shù)據(jù)采集模式與FLIM技術(shù)無縫結(jié)合。
相關(guān)產(chǎn)品
STELLARIS 8 FALCON FLIM熒光壽命成像顯微鏡
參考文獻(xiàn):
1.Gerritsen et al: Fluorescence Lifetime Imaging in Scanning Microscopy. Pawley J (Ed) Handbook of Biological Confocal Microscopy, 3rd ed. Springer New York (2006)
2.F?rster T: Zwischenmolekulare Energiewanderung und Fluoreszenz. Ann. Physik. 437, p 55 (1948)
3.Becker W: Fluorescence lifetime imaging – techniques and applications. J. Microscopy 247/2, pp 119-136 (2012)
4.Borlinghaus RT, Birk H & Schreiber F: Detectors for Sensitive Detection: HyD. In: Mendez-Vilas A (ed.): Current microscopy contributions to advances in science and technology, Formatex Vol. 5, 818-825 (2012)
5.Ponsioen B et al: Detecting cAMP-induced Epac activation by fluorescence resonance energy transfer: Epac as a novel cAMP indicator. EMBO reports 5/12 pp 1176-1180 (2004)
6.Georgakoudi I et al: NAD(P)H and Collagen as in Vivo Quantitative Fluorescent Biomarkers of Epithelial Precancerous Changes. Cancer Research 62, 682– 687 (2002)
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